[0025] 以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。在不背离本发明精神和实质的情况下,对本发明方法、步骤或条件所作的修改或替换,均属于本发明的范围。
[0026] 若未特别指明,实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段。
[0027] 实施例1菌株的分离与鉴定
[0028] 本发明采用平板划线法从受二氯喹啉酸药害烟草根系分离得到一株对二氯喹啉酸有较好降解效果的内生降解菌Q3,Q3菌落形态及扫描电镜照片如图1、图2所示。
[0029] 1、培养基:
[0030] 无机盐培养基:硫酸铵1g,磷酸二氢钾2g,硫酸镁0.5g,氯化钠0.1g,碳酸钙0.5g,1000ml去离子水,pH7.0,高压蒸汽灭菌121℃,30min。
[0031] LB培养基:牛肉膏10g,蛋白胨5g,氯化钠10g(固体培养基加琼脂15g),1000mL去离子水,pH7.0,高压蒸汽灭菌121℃,30min。
[0032] 2、内生降解菌分离纯化
[0033] 取受二氯喹啉酸药害烟草根系,用自来水冲洗干净根系土壤后,用75%酒精漂洗3-5min,无菌水冲洗3-4次,0.1%HgCl2漂洗3-5min,无菌水冲洗3-4次。取最后一次无菌水冲洗液0.5ml涂LB平板,培养48h,观察是否有菌落产生,验证表面消毒是否彻底。0.5g样品转入无菌研钵,加入10ml无菌水研磨,取50μl涂含有二氯喹啉酸的无机盐平板,28℃培养箱中培养,能在无机盐培养基上形成典型菌落的标记为二氯喹啉酸降解菌,共分离得到6株降解菌。经多次转接纯化后,采用高效液相色谱分别测定降解菌对二氯喹啉酸的降解效果,取降解效果最好的Q3菌株进行后续研究。
[0034] 二氯喹啉酸的提取及液相色谱检测条件:取1ml降解液至2ml离心管中,加入0.25ml氯仿-正丁醇混合液(体积比4:1)脱蛋白,充分振荡30min后12000rpm离心5min,取上层水相过0.22μm水相滤膜后用液相色谱检测。液相色谱条件:采用Athana C18柱,流动相为甲醇:0.2%乙酸水溶液(体积比60:40),柱温30℃,流速0.8ml/min,检测波长240nm,进样量
20μL。外标法按峰面积定量测定样品中二氯喹啉酸的含量,按照公式二氯喹啉酸降解率(%)=(空白组二氯喹啉酸浓度-降解菌处理组二氯喹啉酸浓度)/空白组二氯喹啉酸浓度×100%求出其降解率。
[0035] 3、菌株Q3的鉴定
[0036] Q3形态特征:Q3菌落在LB培养基上呈淡黄色,圆形,表面光滑,不透明。扫描电镜下菌体呈短杆状,单个或呈短链排列,1.2~1.5×2.0~4.0微米(见图2)。
[0037] Biolog鉴定:采用Biolog Gen III微孔板对供试细菌进行鉴定,4-6h培养鉴定结果SIM值≥0.75是可以接受的结果;16-24h培养后读取结果时,SIM值≥0.5是可以接受的结果。经18h培养,经仪器自动扫描读数并查询细菌数据库,以SIM值≥0.5为标准,将Q3鉴定为巨大芽孢杆菌(Bacillus megaterium),其SIM值为0.673,PROB值为0.977,DIST值为5.774。
[0038] 分子鉴定:采用试剂盒提取降解菌DNA,所用扩增引物由华大基因公司合成:
[0039] 上游引物为5’-AGAGTTTGATCMTGGCTCAG-3’;
[0040] 下游引物为5’-TACGGCTACCTTGTTACGACTT-3’。
[0041] 扩增反应体系为:10×Buffer(Mg2+)4μl,dNTPs3μl,引物各1μl,菌体DNA2μl,Taq DNA聚合酶1μl,加去离子水至50μl。
[0042] PCR反应条件:94℃5min,94℃30s,55℃40s,72℃60s;40个循环;最后于72℃保存10min。
[0043] PCR产物采用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒进行目的片段回收,回收产物测序工作由华大基因公司完成。测序结果进入GenBank数据库进行比对。将Q3的16S rDNA序列共2377bp登陆到GenBank进行比对并构建系统发育树(参见图3),与巨大芽孢杆菌(Bacillus megaterium)(N1564-A29)的同源性为100%,与Biolog鉴定的结果吻合,因此将该降解菌Q3鉴定为巨大芽孢杆菌(Bacillus megaterium)。
[0044] 实施例2降解菌Q3的降解特性研究
[0045] 培养基pH对降解菌Q3生长及降解率的影响:配制好无机盐培养基(加入微量蔗糖及酵母粉作为附加碳源)分别分装于三角瓶中,每瓶装入50ml培养基,调节培养基pH值分别为5、6、7、8、9(每个处理3个重复),灭菌处理后加入二氯喹啉酸,使每个锥形瓶中二氯喹啉酸的浓度为20mg/L,再以5%(体积分数)的接种量接入活化好的降解菌Q3菌液,放入30℃、180r·min-1的恒温摇床中振荡培养。7d后取样测定其OD600值以及降解率。
[0046] 培养温度对降解菌Q3生长及降解率的影响:配制好无机盐培养基(加入微量蔗糖及酵母粉作为附加碳源)分别分装于三角瓶中,pH调节为8,灭菌处理后加入二氯喹啉酸,使每个锥形瓶中二氯喹啉酸的浓度为20mg/L,以5%(体积分数)的接种量接入活化好的降解菌Q3菌液,分别放置于15℃、20℃、25℃、30℃、35℃、40℃(每个处理3个重复)的恒温摇床中黑暗振荡培养。7d后取样测定其OD600值以及降解率。
[0047] 接种量对降解菌Q3生长及降解率的影响:配制好无机盐培养基(加入微量蔗糖及酵母粉作为附加碳源)分别分装于三角瓶中,pH调节为8,灭菌处理后加入二氯喹啉酸,使每个锥形瓶中二氯喹啉酸的浓度为20mg/L,分别以2%、4%、6%、8%、10%接种量(体积分数)接入活化好的Q3菌液(每个处理3个重复),置于30℃、180r·min-1的恒温摇床中振荡培养。7d后取样测定其OD600值以及降解率。
[0048] 二氯喹啉酸初始浓度对降解菌Q3生长及降解率的影响:配制好无机盐培养基(加入微量蔗糖及酵母粉作为附加碳源)分别分装于三角瓶中,pH调节为8,灭菌处理后加入二氯喹啉酸,使每个锥形瓶中二氯喹啉酸的浓度分别为5、10、20、40、80mg/L,以6%(体积分数)的接种量接入活化好的降解菌Q3菌液,置于30℃、180r·min-1的恒温摇床中振荡培养。7d后取样测定其OD600值以及降解率。
[0049] 培养时间对降解菌Q3生长及降解率的影响:配制好无机盐培养基(加入微量蔗糖及酵母粉作为附加碳源)分别分装于三角瓶中,pH调节为8,灭菌处理后加入二氯喹啉酸,使每个锥形瓶中二氯喹啉酸的浓度为20mg/L,以6%(体积分数)的接种量接入活化好的降解-1菌Q3菌液,置于30℃、180r·min 的恒温摇床中振荡培养。分别在接种后1d、2d、3d、4d、5d、
6d、7d取样测定其OD600值以及降解率。
[0050] 实验结果显示,二氯喹啉酸内生降解菌Q3在培养温度为30℃、pH=8、接种量6%、二氯喹啉酸初始质量浓度为20mg/L的条件下表现出了最佳的降解效果,其对二氯喹啉酸的降解率在7d时达到了90%以上。
[0051] 实施例3菌株Q3对烟草药害的防治效果
[0052] 以K326为供试烟草。将保存的Q3菌株转接到灭菌的液体LB培养基中,于30℃、180r/min恒温摇床黑暗振荡培养过夜。
[0053] 取前茬水稻田使用二氯喹啉酸剂量为推荐剂量的土壤,风干粉碎后装入径18cm,高20cm的盆钵,每盆装土3kg。在烟苗移栽前7d用Q3发酵液(Q3经过夜培养发酵,OD600=0.63,以每株10ml发酵液兑水200ml稀释后均匀施入盆钵。)进行土壤处理。分别设置空白对照组(采用无二氯喹啉酸残留土壤栽培,无药害)、药害对照组(二氯喹啉酸残留土壤,不加降解菌处理)以及处理组(Q3发酵液每株10ml兑水稀释后土壤处理),每处理设置3重复,分别在移栽后50d、65d调查各处理的叶长、叶宽(自上而下完全舒展的第四片叶)以及株高,计算叶长、叶宽、株高抑制率,数据采用Microsoft Excel2003软件处理。
[0054] 叶长抑制率(%)=(空白对照叶长-药害叶长)/空白对照叶长
[0055] 叶宽抑制率(%)=(空白对照叶宽-药害叶宽)/空白对照叶宽
[0056] 株高抑制率(%)=(空白对照株高-药害株高)/空白对照株高
[0057] 表1 Q3对烟草二氯喹啉酸药害的修复效果
[0058]
[0059] 参见表1,菌株Q3可以明显地减轻二氯喹啉酸对烟草的药害。在移栽后30d,药害对照组(Quinclorac but no Q3)的叶长、叶宽及株高均受到明显的抑制,其值分别为空白对照的83.18%、64.75%、67.67%,而菌株Q3生物修复组(Quinclorac+Q3)的叶长、叶宽及株高则恢复到了空白对照的89.49%、92.14%及93.64%。在移栽后45d,药害对照组(Quinclorac but no Q3)的叶长、叶宽及株高被进一步抑制,仅为空白对照的79.25%,40.09%and74.51%,而菌株Q3生物修复组(Quinclorac+Q3)的叶长、叶宽及株高则恢复到了空白对照的93.40%、91.70%及92.29%,显示了对烟草二氯喹啉酸药害的良好恢复效果,参见图4。
[0060] 实施例4菌株Q3微生态菌剂的制备
[0061] 活化菌株Q3,接种至液体LB培养基,180r/min,30℃恒温箱培养24h。
[0062] 其中根据不同的应用方面制备不同的剂型:
[0063] (1)液体制剂:用500mL三角瓶装100ml LB培养基,常规灭菌,冷却后再超净工作台上,用无菌水直接洗下斜面菌体接种入发酵三角瓶中,摇瓶培养30℃,180r/min,培养24h。马上转入发酵罐发酵,细菌发酵罐培养基的配制、灭菌,冷却后接种与发酵,30℃,180r/min,培养48h中止发酵,发酵菌液达到每毫升菌液含有109~1012个芽孢。采用塑料瓶或者塑料袋包装发酵液。
[0064] (2)固体粉剂:参照细菌摇瓶培养基的配制,用500mL三角瓶装100ml LB培养基,常规灭菌,冷却后再超净工作台上,用无菌水直接洗下斜面菌体接种入发酵三角瓶中,摇瓶培养30℃,200r/min,培养24h。马上转入发酵罐发酵,细菌发酵罐培养基的配制、灭菌,冷却后接种与发酵,30℃,180r/min,培养48h中止发酵,离心发酵液,得到菌体,向其中加入木炭粉吸附菌体,菌体个数每克制剂含有1012~1014个芽孢,再用塑料袋进行密封包装。
[0065] 实施例5微生态降解菌剂对烟草药害的防治效果
[0066] 采用微生态降解菌剂(液体制剂)在烟草移栽时灌根。每1公斤降解菌剂用600-800倍清水混匀,烟草移栽后进行灌根处理。在烟草团棵期,再进行施药1次。该施药方式的作用和特征为降解烟草根际周围的二氯喹啉酸,减少烟草对二氯喹啉酸的吸收,缓解二氯喹啉酸对药害,提高烟草产量,其产量达到无药害田的90%以上,而药害田仅是无药害田的30%~40%,参见图5。
[0067] 采用微生态降解菌剂(固体制剂)与烟草基肥混合施用。在烟草移栽前,按1.5公斤降解菌剂/亩剂量与烟草基肥混匀,施至田间。该施药方式的作用和特征为降解烟草根际周围的二氯喹啉酸,减少烟草对二氯喹啉酸的吸收,缓解二氯喹啉酸对药害,提高烟草产量,其产量达到无药害田的90%以上,而药害田仅是无药害田的30%~40%。试验证明,说明所述菌剂能够很好地防治二氯喹啉酸对烟草的药害。
[0068] 虽然,上文中已经用一般性说明、具体实施方式及试验,对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。